Количество хромосом у лошадей

Домашняя лошадь Equus caballus пополнила список видов с полностью расшифрованным геномом. Кроме того, генетики установили, что все люди на 90% — лошади.

Расшифровка генома лошади — результат трехлетней работы большой международной команды под руководством специалистов из института Броуд (Broad Institute of MIT and Harvard) в Кембридже, Массачусетс. Ученые секвенировали полный геном кобылы по кличке Сумрак (Twilight) породы чистокровная английская. В ходе работы они определили последовательность 2,7 млрд нуклеотидов. Таким образом, размер лошадиного генома составил 2,7 Гб, что больше, чем геном собаки (2,5 Гб), но меньше, чем геном человека и коровы (2,9 Гб).

Домашняя лошадь принадлежит к роду Equus, которыйразделился на 8-9 видов около 3 миллионов лет назад. Человек впервые одомашнил лошадь 4-6 тысяч лет назад, хотя по мере развития техники все меньше использует ее как тягловую силу и транспортное средство и все больше – для спорта и отдыха.

Как ученые справились с чистокровной английской кобылой

Предположительно, геном лошади содержит 20322 кодирующих белок гена. Значительное число этих генов находится в родстве с генами человека (16617 генов), мыши (17106 генов) и собаки (17106 генов). Существенную часть генома (46%) составляют повторяющиеся участки ДНК (повторы), как и в геномах других млекопитающих. Это в основном некодирующие участки.

Все мы немножко лошади

Биологи нашли довольно большое сходство между ДНК человека и лошади, что объясняет большое количество сходных болезней. Около 90 генетических болезней лошади имеют аналоги и у человека.

У домашней лошади 64 хромосомы (у человека 46), но по характеру сцепления генов (группировка генов друг с другом) более половины лошадиных хромосом похожи на человеческие. В то же время в геноме собаки таких хромосом менее трети. То есть в лошадином геноме по сравнению с человеческим довольно мало хромосомных перестроек.

Об эволюции центромеры

Из лошадиного генома ученые получили важные данные о строении и эволюции ключевого хромосомного участка – центромеры. Это участок посередине хромосомы, играющий важную роль в делении клетки, в равномерном расхождении по двум дочерним клеткам наследственного материала. Именно к ним прикрепляются нити веретена деления, которые тянут в разные стороны половинки хромосом. В то же время до сих пор известно очень мало о происхождении центромер.

Ученых заинтересовала центромера на 11-й хромосоме лошади. В ее структуре, в отличие от всех других центромер, практически не было нуклеотидных повторов. Это навело биологов на мысль, что данная центромера еще совсем молодая и не обзавелась повторами. Таким образом, они получили возможность увидеть центромеру в начале ее эволюции.

Много пород, хороших и разных

Помимо секвенирования генома ученые провели генетический анализ разных пород лошадей. Они описали около миллиона одиночных нуклеотидных замен (СНИПов) в десяти участках генома. Результаты показали, что разные породы лошадей более генетически разнообразны, чем породы собак. Это объясняется разницей в процессе одомашнивания лошадей и собак: лошади не проходили при этом через такое узкое «бутылочное горлышко», сужающее генетическое разнообразие, как собаки.

Специалисты использовали расшифрованный геном и для практической задачи – они изучили генетические причины «леопардовой пятнистости» у лошадей, когда их шкура покрыта белыми пятнами. Все бы ничего, но эта особенность окраски сопровождается нарушением зрения – животное теряет способность видеть в сумерках. Кстати, такое нарушение зрения встречается и у человека.

Наиболее вероятные причины этой патологии, по мнению ученых, — две кандидатных мутации (нуклеотидных замены) гена меластина, отвечающего за пигментацию как в клетках сетчатки глаза, так и в клетках кожи.

Результаты расшифровки лошадиного генома опубликованы 6 ноября в журнале Science.

Из школьных учебников по биологии каждому доводилось знакомиться с термином хромосома. Понятие было предложено Вальдейером в 1888 году. Оно переводится буквально как окрашенное тело. Первым объектом исследований стала плодовая мушка.

Общее о хромосомах животных

Хромосома – это структура ядра клетки, в которой хранится наследственная информация. Она образуются из молекулы ДНК, в которой содержится множество генов. Другими словами, хромосома – это молекула ДНК. Ее количество у различных животных неодинаковое. Так, например, у кошки – 38, а у коровы -120. Интересно, что самое маленькое число имеют дождевые черви и муравьи. Их количество составляет две хромосомы, а у самца последних – одна.

хромосома xy и xx

У высших животных, так же как и у человека, последняя пара представлена ХУ половыми хромосомами у самцов и ХХ – у самок. Нужно обратить внимание, что число этих молекул для всех животных постоянно, но у каждого вида их количество отличается. Для примера можно рассмотреть содержание хромосом у некоторых организмов: у шимпанзе – 48, речного рака -196, у волка – 78, зайца – 48. Это связано с разным уровнем организации того или иного животного.

На заметку! Хромосомы всегда размещаются парами. Генетики утверждают, что эти молекулы и есть неуловимые и невидимые носители наследственности. Каждая из хромосом содержит в себе множество генов. Некоторые считают, что чем больше этих молекул, тем животное более развитое, а его организм сложнее устроен. В таком случае, у человека хромосом должно насчитываться не 46, а больше, чем у любого другого животного.

Сколько хромосом у различных животных

Необходимо обратить внимание! У обезьян количество хромосом приближено к значению человека. Но у каждого вида результаты отличаются. Итак, у различных обезьян насчитывается следующее количество хромосом:

  • Лемуры имеют в своем арсенале 44-46 молекул ДНК;
  • Шимпанзе – 48;
  • Павианы – 42,
  • Мартышки – 54;
  • Гиббоны – 44;
  • Гориллы – 48;
  • Орангутанг – 48;
  • Макаки – 42.
  • У семейства псовых (хищных млекопитающих) хромосом больше, чем у обезьян.

  • Так, у волка – 78,
  • у койота – 78,
  • у лисицы малой – 76,
  • а вот у обыкновенной – 34.
  • У хищных зверей льва и тигра присутствуют по 38 хромосом.
  • У домашнего животного кошки – 38, а у его оппонента собаки почти в два раза больше – 78.
  • У млекопитающих, которые имеют хозяйственное значение, количество этих молекул следующее :

    • кролик – 44,
    • корова – 60,
    • лошадь – 64,
    • свинья – 38.

    Познавательно! Самыми большими хромосомными наборами среди животных обладают хомячки. Они имеют 92 в своем арсенале. Также в этом ряду идут ежики. У них есть 88-90 хромосом. А самым маленьким количеством этих молекул наделены кенгуру. Их численность составляет 12. Очень интересен тот факт, что у мамонта 58 хромосом. Образцы взяты из замороженной ткани.

    Для большей наглядности и удобства, данные других животных будут представлены в сводке.

    Наименование животного и количество хромосом:

    Пятнистые куницы 12
    Кенгуру 12
    Желтая сумчатая мышь 14
    Сумчатый муравьед 14
    Обыкновенный опоссум 22
    Опоссум 22
    Норка 30
    Барсук американский 32
    Корсак (лисица степная) 36
    Лисица тибетская 36
    Панда малая 36
    Кошка 38
    Лев 38
    Тигр 38
    Енот-полоскун 38
    Канадский бобр 40
    Гиены 40
    Мышь домовая 40
    Павианы 42
    Крысы 42
    Дельфин 44
    Кролики 44
    Человек 46
    Заяц 48
    Горилла 48
    Лисица американская 50
    Полосатый скунс 50
    Овца 54
    Слон (азиатский, саванный) 56
    Корова 60
    Коза домашняя 60
    Обезьяна шерстистая 62
    Осел 62
    Жираф 62
    Мул (гибрид осла и кобылы) 63
    Шиншилла 64
    Лошадь 64
    Лисица серая 66
    Белохвостый олень 70
    Лисица парагвайская 74
    Лисица малая 76
    Волк (красный, рыжий, гривистый) 78
    Динго 78
    Койот 78
    Собака 78
    Шакал обыкновенный 78
    Курица 78
    Голубь 80
    Индейка 82
    Эквадорский хомячок 92
    Лемур обыкновенный 44-60
    Песец 48-50
    Ехидна 63-64
    Ежи 88-90

    Количество хромосом у разных видов животных

    Как видно, каждое животное обладает разным количеством хромосом. Даже у представителей одного семейства показатели отличаются. Можно рассмотреть на примере приматов:

  • у гориллы – 48,
  • у макаки – 42, а у мартышки 54 хромосом.
  • Почему это так, остается загадкой.

    Сколько хромосом у растений?

    Наименование растения и количество хромосом:

    Видео

    Ответ

    Перед митозом происходит репликация ДНК и каждая хромосома станет двухроматидной (64 хромосомы, 128 хроматид) .

    В метафазе в плоскости экватора выстроятся 64 двухроматидные хромосомы.

    К каждому полюсу в анафазе митоза отойдут по 64 хроматиды (они теперь будут однохроматидными хромосомами) .

    В результате к началу телофазы у каждого полюса соберется набор из 64 однохроматидных хромосом.

    В результате деления образуются 2 клетки, в каждой из которых ядро содержит 64 однохроматидные хромосомы.

    Перед следующим делением произойдет репликация ДНК и каждая хромосома станет двухроматидной (64 хромосомы, 128 хроматид)

    Справочник

    • Обзоров: 126
    • Биографии: 12
    • Записей в дневниках: 13
    • Новостей: 16
    • Число хромосом у разных видов

    Арабидопсис (Arabidopsis thaliana) 10
    Клевер 14
    Горох 14
    Рожь 14
    Лук (Allium cepa) 16
    Крыжовник 16
    Кукуруза (Zea mays) 20
    Ель 24
    лилия 24
    Томат 24
    Вишня 32
    Тополь 38
    Пшеница 42
    Картошка (S.tuberosum) 48
    Ужовник 48
    Береза 84
    Хвощ 216
    Папоротник

    1200

    Вид 2n
    Человек (Homo sapiens) 46
    Горилла 48
    Макака (Macaca mulatta) 42
    домашние животные
    Кошка (Felis domesticus) 38
    Собака (Canis familiaris) 78
    Кролик 44
    Лошадь 64
    Корова (Bovis domesticus) 120
    Курица (Gallus domesticus) 78
    Утка 80
    Свинья 40
    Овца 54
    лабораторные животные
    Плодовая мушка (D.melanogaster) 8
    Морской еж (Strongylocentrotus purpuratus) 42
    Шпорцевая лягушка (Xenopus laevis) 36
    Мышь (Mus musculus) 40
    Дрожжи (S.cerevisiae) 32
    Нематода 22/24
    Крыса 42
    Морская свинка 16
    позвоночные
    Еж 96
    Лиса 34
    Голубь 16
    Карп 104
    Минога 174
    Лягушка (Rana pipiens) 26
    Cазан 104
    растения
    Клевер 14
    Тополь 38
    Кукуруза (Zea mays) 20
    Горох 14
    Береза 84
    Ель 24
    Лук (Allium cepa) 16
    Арабидопсис (Arabidopsis thaliana) 10
    Картошка (S.tuberosum) 48
    Ужовник 48
    лилия 24
    Хвощ 216
    Томат 24
    Крыжовник 16
    Вишня 32
    Рожь 14
    Пшеница 42
    Папоротник
    беспозвоночные
    Миксомицеты

    14
    Трипаносома ?
    Бабочка 380
    Шелкопряд 56
    Протей (Necturus maculosis) 38
    Рак (Cambarus clarkii) 200
    Гидра 30
    Аскарида 2
    Пчела 16
    Муравей (Myrmecia pilosula) 2
    Виноградная улитка 24
    Земляной червь 36
    Речной рак 116
    Малярийный плазмодий 2
    Радиолярия 1600

    Наименьшее число хромосом: самки подвида муровьев Myrmecia pilosula имеют пару хромосом на клетку. Самцы имеют только 1 хрососому в каждой клетке.
    Наибольшее число: вид папоротников Ophioglossum reticulatum имеет около 630 пар хромосом, или 1260 хромосом на клетку
    Верхний предел числа х-м не зависит от количества ДНК которое в них входит: у американской амфибии Amphiuma ДНК в

    30 раз больше, чем у человека, которая помещается в 14 хромосомах. Самая маленькая хромосома амфибии больше самых крупных хромосом человека —> большое количество ДНК может не влиять на увеличение числа хромосом.

    Нет верхнего предела ограничивающего количество хромосом: бабочка Lysandra nivescens n=140-141 хромосома.
    Существует минимальная масса хромосомы необходимая для расхождения хромосом в митозе — критическая масса. Наличие такой массы может частично объяснить избыточность ДНК.

    Лошадей природа наделила немного большим количеством хромосом ДНК, чем человека. Следовательно, 46 сразу отпадает (именно это число — «человеческое», если не говорить о каких-то отклонениях).

    84 хромосомы у кого бы вы думали? У Берёзы. Чуть меньше у утки (80) и у курицы (78)

    480 руб. | 150 грн. | 7,5 долл. ‘, MOUSEOFF, FGCOLOR, ‘#FFFFCC’,BGCOLOR, ‘#393939’);» onMouseOut=»return nd();»> Диссертация — 480 руб., доставка 10 минут , круглосуточно, без выходных и праздников

    Автореферат — бесплатно , доставка 10 минут , круглосуточно, без выходных и праздников

    Шараськина Ольга Геннадьевна. Аберрации хромосом у лошади при нарушениях воспроизводительной функции : диссертация . кандидата биологических наук : 06.02.01.- Санкт-Петербург, 2006.- 103 с.: ил. РГБ ОД, 61 06-3/317

    Содержание к диссертации

    1 .Обзор литературы 8

    1.1. Нарушения плодовитости у лошадей 8

    1.1.1. Бесплодие лошадей 8

    1.1.2. Мутации как причины снижения плодовитости 12

    1.2. Кариотип лошади и хромосомные нарушения 17

    1.2.1. Нормальный кариотип лошади 17

    1.2.2. Хромосомные аберрации у лошадей 19

    1.2.3. Хромосомный полиморфизм у лошадей 19

    1.2.4. Аномалии половых хромосом у кобыл 21

    1.2.5. Аномалии половых хромосом у жеребцов 25

    1.2.6. Псевдогермафродитизм и интерсексуальность 27

    1.2.7. Хромосомные дефекты при ранних абортах 28

    1.2.8. Аутосомные трисомии 30

    1.2.9. Полиплоидия у лошадей 30

    1.3. Типы и механизмы возникновеїгия хромосомных нарушений .31

    1.4. Причины хромосомных аберраций 35

    2. Материал и методика исследований 38

    2.1. Объект исследований 38

    2.2. Методы исследования 45

    3. Результаты собственных исследований 50

    3.1. Морфометрический анализ хромосомного набора лошадей без физиологических и фенотипических отклонений от нормы 50

    3.2. Морфометрический анализ хромосомного набора лошадей имеющих физиологические и фенотипические отклонения от нормы 52

    3.3. Структурные аберрации хромосом у лошадей с физиологическими и фенотипическими отклонениями 67

    3.4. Геномные мутации у лошадей с физиологическими и фенотиническими отклонениями 74

    Обсуждение результатов 81

    Предложения производству 90

    Список литературы 91

    Введение к работе

    Еще не прошло и половины столетия как Lcvan Л. & Tjio J.(1956) на человеке, Moorhed et al. (1960) на животных успешно апробировали методику культивирования лимфоцитов периферической крови для получения препаратов хромосом. Однако за эти годы на многих видах млекопитающих выполнены сотни исследований, позволившие на новом уровне познать закономерности функционирования наследственности и изменчивости. По сути дела только с 60х годов XX века было установлено истинное число и морфология хромосом, их репродукция у большинства продуктивных (Гольдман И.Л. и др., 1973, Яковлев А.Ф., 1985) и домашних видов животных, а в последующем выявлены геномные и структурные аберрации в кариотипах.

    В нашей стране первые и наиболее масштабные исследования по цитогенетике животных начаты в ВИЖс (Гольдман И.Л.и др., 1973, Гольдман И.Л., Жигачев А.И., 1977) и ВНИИРГЖ (Яковлев А.Ф., Носач А.К., Трофимова Л.В., цит. по А.Ф.Яковлеву, 1985). В первом из них заложены основы ветеринарной цитогенетики, а во втором — молекулярной цитогенетики.

    С 80х годов в Ленинградском Ветеринарном Институте (Санкт-Петербургская Государственная Академия Ветеринарной Медицины) были развернуты работы и развито несколько направлений в цитогенетике: популяцнонная, экологическая и ветеринарная (Жигачев А.И., Никитин Н.С., Черкасов В.В. 1984)

    Исследования по цитогенетике выполнялись и в других НИИ и ВУЗах (Стефанова В.,1987, Куликова С.Г., 1992 , Кочнева М.Л., 2005). В качестве объекта для исследований в основном использовали крупный рогатый скот и реже свиней. При этом были получены важные в теоретическом и практическом отношении результаты, которые излагаются в главе «Обзор литературы». К сожалению, онтогенетических исследований на лошади крайне мало как в нашей стране, так и за рубежом (Пименова Т.И., 1987, Жигачев Л.И., 1996, Bowling А., 1997, Kuiper H.J.,2001). В тех же немногих работах, которые были выполнены на лошади показано, что цитогенетические методы могут найти ігоимєнєеіиє, прежде всего для вьіясЕїения причины нарушения воспроизводительной способности животных (Hainan С, 1982, Жигачев А.И., Богачева Т.В.,1993, Bowling А.Т., 1997, FCuipcr H.J.,200l). Безусловно, это имеет особую практическую ценность в племенном коневодстве, если еще иметь в виду биологическое малоплодис и значительный интервал между поколениями у этого вида.

    По расчетам ВНИИКоневодства (Калашников В.В., 2003) научно обоснованная потребность в лошадях в стране превышает фактическую численность более чем втрое и составляет 6,2 млн. голов. В связи с этим значение цитогенетических исследований в коневодстве трудно переоценить.

    Цель и задачи исследований

    Целью работы является изучение кариотипа, частоты и спектра аберраций у лошадей с нарушениями половых циклов, с фенотипическими отклонениями от нормы, с аномальным потомством для обоснования и разработки принципов цитогенетического мониторинга в коневодстве.

    Задачи исследований: — провести морфометрический анализ хромосом лошадей без фенотипических и физиологических отклонений; изучить кариотип лошадей с нарушениями половых циклов, с фенотипическими отклонениями от нормы, с аномальным потомством; определить показатели генетической нестабильности у лошадей с фенотипическими и физиологическими нарушениями; — выявить животных с дисбалансом половых хромосом; — выявить взаимосвязь изменений кариотипа с фенотипическими и физиологическими отклонениями от нормы.

    Впервые получены данные по показателям хромосомной нестабильности у лошадей с нарушениями половых циклов, с фенотипическими отклонениями от нормы, с аномальным потомством.

    Приоритетными являются данные о том, что частота хромосомных аберраций у лошадей с физиологическими и фенотипическими отклонениями от нормы значительно выше, чем у лошадей без нарушений.

    В результате отбора по фенотипу и физиологическим изменениям, выявлены и описаны животные с дисбалансом половых хромосом: 64,ХХ/63,ХО — мозаика Тернера и 64,ХУ/65,ХХУ — мозаика Кляйнфельтера.

    Научная и практическая значимость работы

    В результате исследований получены новые данные но частной генетике лошади и ветеринарной цитогенетике.

    Полученные данные могут быть использованы: для выявления причті фенотипических отклонений от нормы, нарушений физиологических функций; для цитогенетическои диагностики жеребцов и кобыл перед началом племенного использования.

    Основные результаты исследований рассмотрены и обсуждены на отчетах кафедры ветеринарной генетики и животноводства СПбГАВМ в 2002 -2005гг., на научных конференциях профессорско-преподавательского состава и аспирантов СПбГАВМ в 2002 — 2005гг., на Всероссийской научно-практической конференции «Искусствешгое осеменение в коневодстве — истоки биотехнологии в животноводстве» (ВНИИКоневодства РАСХН, 2004).

    Структура и объем работы

    Диссертация изложена на 103 страницах и состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов исследования, результатов исследования и обсуждения, выводов, предложений и библиофафического указателя (154 названий). Работа иллюстрирована 13 таблицами и 9 рисунками.

    Основные положения, выносимые на защиту

    Повышенная частота хромосомных аберраций у лошадей с физиологическими и фенотипическими отклонениями от нормы.

    Мозаика Тернера 64,ХХ/63,ХО, ее связь с фенотипическими проявлениями.

    Мозаика Кляйнфсльтера 64,ХУ/65,ХХУ, ее связь с фенотипическими проявлениями.

    Цитогенетический мониторинг в племенном коневодстве.

    Мутации как причины снижения плодовитости

    В популяциях животных постоянно, с определенной частотой, возникают мутации, представляющие собой стойкие изменения в струїстуре ДНК, морфологии и количественном составе хромосом. Обычно мутации приводят к нарушению сложившегося баланса генов, особенно тех, которые обладают сильным эффектом.

    Фенотипически мутация нередко проявляется в форме врожденных уродств (аномалий), в смертности, снижении жизнеспособности и устойчивости к болезням, нарушении воспроизводительной функции.

    Мутации могут быть спонтанными (возникающие в естественных условиях среды) и искусственно вызванными (индуцированными). Мутации, возникающие в половых клетках, передаются по наследству; возникающие в соматических клетках не наследуются.

    В итоге пито генетического анализа, прежде всего, выясняется, является ли аномалия наследственной или она вызвана действием вредных факторов внешней среды. В случае если возникновение патологии главным образом связано с действием мутантного гена или хромосомной аберрации, аномалия является генетической. Генетические аномалии животных чаще всего представляют собой олигогенные признаки, т.е. находящиеся под контролем немногих генов. Но, обычно, при скрещивании заведомо известных гетерозигот они дают расщепление, характерные для взаимодействия одной пары аллельных генов (Эрнст Л.К., Жигачев А.И., 1990).

    Harrison (1996), в результате проведенных наблюдений в период с 1986 по 1996 год, в США установил, что аборты у лошадей из-за врожденных аномалий были в 9,8% случаев.

    У лошадей доминантные мутации могут оказывать влияние на организм в своих крайних проявлениях. Животные имеющие такие гены выживают редко, хотя некоторые наследственные заболевания, обусловленные доминантным геном, такие как НУРР (гипергликемический периодический паралич) могут иметь исключения. Большинство же изученных наследственных аномалий имеют рецессивный тип наследования, из чего вытекает, что родители могут быть фенотииически нормальными и не пораженными данным заболеванием. Рецессивные гены «спрятанные» в гетерозиготах за доминантными нормальными генами могут широко распространяться в породе, пока их не распознают. Вредные мутации, имеющие место в чистокровных породах, обычно проявляются случайно, в наиболее успешных линиях, участвующих в воспроизводстве (Bowling А.Т.,1997)

    В коневодстве описан ряд мутаций, приводящих к нарушению плодовитости, снижению жизненности плода, сопровождающихся летальным исходом и т.д.

    Летальные дефекты лошадей.

    Атрезия ободочной кишки. Этот генетически обусловленный летальный дефект был обнаружен в 1925г Нуссхагом у нескольких жеребят чистокровной верховой породы. Жеребята появлялись на свет при нормальных родах, но обнаруживали слабый сосательный рефлекс и страдали тяжелыми запорами. Не отходил даже первородный кал и любое послабляющее средство не давало эффекта. Гибель наступала на третий день.

    Такая же картина наблюдалась у 25 потомков першеронского жеребца; они имели либо суженную, либо слепо кончающуюся восходящую кишку, часто в сочетании с глиомами мозга. Жеребята, от этого производителя, обычно погибали при явлениях сильнейших колик через несколько дней после рождения. Установлен простой рецессивный тип наследования. Поскольку жеребят, погибших по причине атрезии ободочной кишки, часто исследуют на основании эмпирического опыта только па суставолом жеребят, есть основания полагать, что порок большей частью остается незамеченным. Атрезия ободочной кишки включена в список летальных дефектов под индексом В1 (Визнср Э., Виллер З.Д979)

    Лбрахия. Отсутствие передних конечностей у жеребят. Достаточно часто встречается среди немецких тяжелых пород лошадей. Так, в 1939г Маудер установил в течении одного года восемь случаев рождения жеребят с абрахией. Все жеребята рождались жизнеспособными, но так как не могли стоять и, следовательно, самостоятельно принимать корм, то вскоре после рождения они погибали или подвергались убою. Это уродство имеет рецессивный тип наследования и занесено в международный список летальных дефектов с индексом В8 (Визнер Э., Виллер 3., 1979).

    Артрогрипоз грудных конечностей. Искривление грудных конечностей в запястном, путовом и венечном суставах, с заметно укороченными пальцевыми сгибателями приводит к тому, что в тяжелых случаях животное вообще не в состоянии подняться. Pravochenski R. (1953) описал жеребят с изуродованными обеими грудными конечностями в одном из польских конных заводов. Эта форма искривления передних конечностей может сочетаться с кривошеей и сколиозом черепа.

    Этот летальный фактор был обозначен индексом В5. Относительно наследования аномалии искривления передних конечностей у жеребят нет полной ясности. Некоторые авторы предполагают простой рецессивный тип наследования, а некоторые предполагают доминантную мутацию (Визнер Э., Виллер 3.,1979).

    Атаксия представляет собой преимущественно поражение спиноцеребеллярной системы, которое встречается у многих домашних животных и выражается в нарушениях координации.

    Хромосомный полиморфизм у лошадей

    Интенсивные исследования кариотипа лошадей начались в 60х годах XX века, когда новые методы культивирования клеток и приготовления препаратов хромосом активно внедрялись в практику. Установлено не только точное число хромосом, как у самой лошади, так и у различных гибридов с ней, но и на основе изучения линейной дифференцированности хромосом был стандартизирован ее кариотип (А.Ф.Яковлев, 1985).

    Нормальный кариотип лошади насчитывает 64 хромосомы, из которых 26 аутосом мета- и субметацентриков, 36 акр о центрических аутосом, металентрическая Х-хромосома и небольшая акроцентрическая У-хромосома (Buckland et al.,1976, Ryder et al.,1978, Графодатский и др., 1988, Richer et al., 1990, Farag I.M.,et a. 1993).

    Для достоверной идентификации хромосом применяется техника четырех окрашиваний. Такой прием позволяет наиболее достоверно распределить хромосомы по парам, идентифицировать половые хромосомы (Bowling, 1997).

    Дифференциальная С-окраска позволяет выявить положение центромер на хромосоме по темнокрашенным блокам прицентромерного гетерохроматина. Этот тип окраски необходим для идентификации половых хромосом, так как У-хромосома практически вся из гетерохроматина, что отличает ее от остальных маленьких акроцентрических аутосом. С-окраска так же позволяет отличить Х-хромосому от похожих по размеру аутосом (Яковлев А.Ф., 1985, Bowling, 1997).

    Дифференциальная G-окраска применяется для идентификации пар гомологичных хромосом и выявления структурных и числовых аберраций. Использование G-окрашивания дает возможность проводить полное кариотипирование с идентификацией всех хромосом (Яковлев А.Ф.,1985).

    Рутинная окраска хромосом позволяет определить количество хромосом на метафазной пластинке и выявить числовые и структурные аберрации.

    Также используется окрашивание серебром для идентификации ядрышкого организатора, который производит рибосомальнуто РНК участвующую в транскрипции генетического кода (Bowling, 1997).

    По общепринятой классификации в кариотипе лошади можно выделить одну группу из четырех крупных метацентрических аутосом, вторую in пяти средних по величине метацентриков, одну крупную аутосому субметацентрического типа и группу из 18 акроцентриков различной длины, а так же половые хромосомы: X — большой метацентрнк и У — маленький акроцентрик (Levan et al, 1964).

    Экспериментально установлено, что аномалии хромосом являются причиной снижения хозяйственных и продуктивных качеств животных в связи с эмбриональной смертностью, рождением плодов с уродствами и падением плодовитости у носителей аберрантных хромосом и их потомков (Эрнст Л.К., Жигачев А.И.,1990). Аберрации во многих случаях не влияют на фенотип животных, поэтому при бесконтрольном использовании производителей появляется возможность распространения измененной хромосомы в популяции (Яковлев А.Ф., 1983, Яковлев А.Ф., Жигачев А.И., 1987, Жигачев А.И. и др., 1989).

    Лошади цитогенетически изучены меньше других основных видов с-х животігьіх, для которых описаны разные типы хромосомных и геномных мутаций. У лошадей известны главным образом геномные нарушения, связанные с дисбалансом половых хромосом (Hare W.C.D. et al., 1979, Wilier S. et al., 1981, Cribiu E.P., 1984). Причина этого заключается в том, что у лошадей не проводился массовый нитогенетический анализ. В коневодстве цитогенетически исследовали в основном особей, у которых обнаруживали бесплодие или другие отклонения от нормальной жизнедеятельности (ПименоваТ.И., 1983, Демин Ю.С., ПименоваТ.И., 1985).

    Помимо нарушений, связанных с половыми хромосомами, у лошадей описано несколько случаев хромосомных перестроек аутосом и изменение их количества (Power М., 1991, Kubetn Е. et al., 2002).

    Морфометрический анализ хромосомного набора лошадей имеющих физиологические и фенотипические отклонения от нормы

    Морфометрический анализ хромосом производился для каждого исследуемого животного при рутинном окрашивании. Для этого анализировались метафазы, имеющие полный диплоидный набор хромосом. Вычисляли относительную длину хромосом и центромерныи индекс и индекс спирализации.

    Морфометрический анализ хромосом коб. Греция показал, что показатели относительной длины соответствуют данным, полученым при анализе хромосом фенотипически и физиологически нормальных животных <таблица 2).

    Х-хромосома в большинстве случаев являлась второй по величине, ее средняя длина составила 5,59% с колебаниями от5506% до 6,12% . Центромерныи индекс Х-хромосомы составил в среднем 42,97% с колебаниями от 42,62% до 43,5% . Эти данные позволяют отнести ее к хромосомам метацентрического тина.

    Хромосомы первой пары в кариотипе Греции имеют среднее значение центромерного индекса 38,92% с колебаниями от 38,67% до 39,17%, что говорит о их метацентрическом строении.

    Хромосомы второй и третьей пары не сильно различаются по относительной длине, имеют субметацентрическое строение, но центромерныи шщекс третьей пары имеет несколько меньшее значение.

    При сравнении данных морфометрического анализа коб. Греция с данными, полученными при анализе хромосом фенотипически и физиологически нормальных животных отмечается различие в показателях центромерного индекса у хромосом шестой, восьмой, девятой и десятой пары. У «нормальных» животных центромерный индекс хромосом №6 и №8 — 10 указывает на их мстацентрическое строение. Такие же данные получены Т.И.Пименовой (1987), а у Греции показатели индекса соответствуют субметацентр ическому типу. Разница значений центромерного индекса у коб.Греция и нормальных животных по шестой паре хромосом недостоверна (Р 0,9), по восьмой паре имеет высокую степень достоверности (Р=0,99), по девятой и десятой паре — очень высокую степень достоверности (Р 0,999).

    Индекс спирализации хромосом в метафазах отобранных для морфометрического анализа составил по первой формуле — 28,8%, по формуле Т.И.Пименовой — 27,4%.

    При морфометрическом анализе хромосом коб. Валенсия были получены следующие данные: показатели относительной длины хромосом существенно не отличаются от данных полученных при анализе нормальных животных. X-хромосома в большинстве случаев являлась самой крупной в наборе. Ее средняя относительная длина составила 7,72% с колебаниями от 7,46% до 7,98%. (таблица 3)

    Центромерный индекс составил в среднем 46, (5% с колебаниями от 45,73% до 46,57%. Согласно полученным данным Х-хромосома является метацентриком.

    Хромосомы четвертой пары у Валенсии имеют метацентрическое строение (38,88% — центромерный индекс) в отличие от субметацентрических хромосом четвертой пары «нормальных» животных (33,37%). Достоверность разницы значений центромерного индекса очень высокая (Р 0,999)

    По данным анализа «нормальных» животных, хромосомы одиннадцатой пары имеют метацентрическое строение (41,38% — центромерный индекс), а центромерный индекс Валенсии (35,57%) указывает на субметацентрическое строение этой пары хромосом. Разница достоверна (Р 0,99).

    Индекс спирализации хромосом составил по формуле (1) — 27,9%, по формуле (2) — 32,2%.

    Морфометрический анализ хромосом коб. Хелсора так же не выявил существенных различий в показателях относительной длины хромосом от полученных ранее. Стоит отметить, что у коб. Хелсора Х-хромосома в основном вторая по величине. Относительная длина Х-хромосомы в среднем 6,28% с колебаниями от 6,73% до 5,83%. Центромерный индекс Х-хромосомы — 37,96% с колебаниями от 37,37% до 38,55%. Эти данные указывают на то, что некоторые Х-хромосомы в кариотипе данной лошади имеют субметацентрическое строение, т.к. их центромерный индекс менее 37,5%. Такие Х-хромосомы встречались в 32,4% случаев, (таблица 4)

    Как и у коб.Греция, хромосомы первой пары у коб.Хелсора имеют метацентрическое строение, согласно величине центромерного индекса. Индекс спирализации составил по формуле (I) — 30,9%, по формуле (2) — 30,6%. Анализ относительной длины хромосом коб.Форма не выявил существенных отклонений от показателей «нормальных» лошадей.

    Х-хромосома самая крупная в кариотипе со средней относительной длиной 7,3% с колебаниями от 6,95% до 7,65%. Центромерный индекс Х-хромосомы 41,22% с колебаниями от 40,81% до 41,63% говорит о ее метацентрическом строении. (Таблица 5)

    Анализ показателей центромерного индекса выявил различия строения хромосом восьмой, двенадцатой и тринадцатой пар у коб.Форма и лошадей без физиологических и фенотипических отклонений. Достоверность разности во всех случаях имеет высокую степень (Р 0,999).

    У коб.Форма хромосомы восьмой пары имеют субметацентрическое строение (32,27% — центромерный индекс) в отличие от метацентрического строения (39,15%) у лошадей без физиологических и фенотипических отклонений.

    Структурные аберрации хромосом у лошадей с физиологическими и фенотипическими отклонениями

    Для изучения структурных изменений хромосом исследовали от 50 до 102 метафаз для каждой лошади. Учитывали количество метафаз с аберрациями, общее число аберраций, а так же провели учет хроматидных пробелов (g).

    У коб. Греция, с целью обнаружения хромосомных аберраций было исследовано 102 метафазы. Из них 7 метафаз (6,86%) имели аберрации: 2 метафазы имели по одному нарушению, 4 метафазы — по два, Іметафаза — 4 аберрации. Среди аберрантных хромосом 5 (35,71%) были кольцевыми (г).

    Отдельно производился учет хроматидных пробелов. Частота клеток с щелями (гэпы) у коб.Греция составила 4,9%, а количество щелей на 100 клеток — 4,8. В одной из клеток наблюдалось одновременно 2 пробела. В двух метафазах наблюдались и пробелы и аберрации.

    При сравнении результатов частоты структурных изменений хромосом у коб.Греция, с данными, полученными Т.И.Пименовой (1987) при анализе уровня естественного мутирования хромосом в соматических клетках лошадей, наблюдаются некоторые различия в показателях. Данные коб.Греция сравнивали с результатами анализа лошадей полукровных верховых пород и лошадей спортивной группы, т.к. коб.Греция является полукровной помесью и используется в спорте. Наблюдаются различия по показателю метафаз с аберрациями у коб.Греция (6,86%) и полукровными верховыми лошадьми (3,79%) с высокой степенью достоверности (Р 0,99); при сравнении этого же показателя крб.Греция с лошадьми спортивной группы (5,11%), разница не так велика.

    Разница в частоте аберраций на 100 клеток достоверна (Р 0,999) у коб.Греция (13,7) и полукровных лошадей (3,96), а так же у коб.Греция и лошадей спортивной группы (6,67). У коб.Валенсия, для анализа хромосомных аберраций, было исследовано 54 метафазы. Количество аберраций на 100 клеток — 22,22. В 9и метафазах (16,6%) обнаружены аберрации, представленные одиночными фрагментами — 75% и парными фрагментами — 25%. Кольцевых хромосом не обнаружено. В семи клетках встречалось по одному нарушению, и по одной метафазе с двумя и тремя аберрациями.

    Частота клеток с пробелами составила 5,55% (3 пробела), количество на 100 клеток — 5,5. Щели встречались по одной на метафазу.

    При сравнении результатов коб.Валенсия и данных, полученных Т.И.Пименовои (1987) использовали данные полукровных верховых и чистокровных верховых лошадей, т.к. кобыла является помесью латвийской и чистокровной верховой породы.

    Выявлены значительные различия в количестве метафаз у коб.Валенсия (16,6%) и лошадей полукровных пород (3,79%), и чистокровной верховой породы (4,75%). Разница в обоих случаях значительна и достоверна (Р 0,999).

    Достоверная разница (Р 0.999) отмечается и при сравнении показателей частоты аберраций на 100 клеток у коб.Валенсия (22,22) с данными полукровных (3,96) и чистокровных (5,75) лошадей.

    Различие так же наблюдается в частоте появления пробелов у коб.Валенсия (5,55%) и лошадей чистокровной верховой породы (7,25%), однако разница в данном случае имеет низкую достоверность (Р 0,9).

    Из 61 метафазы коб.Хелсора — 6 (9,8%) были с аберрациями. Из них аберрации представленные одиночными фрагментами — 50%, парными фрагментами — 33,33%. Количество аберраций на 100 клеток составило 9,8. Аберрации располагались по одной на метафазу. Одна метафаза содержала кольцевую хромосому (16,66%). Частота клеток с пробелами составила — 4,93% (3 пробела), количество на 100 клеток — 4,9. Пробелы встречались по одному на метафазу. В двух метафазах присутствовали и пробел и аберрация.

    Так как коб.Хелсора является помесью ахалтекинской и торийской пород, сравнение результатов структурных изменешш хромосом проводился с данными лошадей ахалтекинской породы и полукровных верховых.

    Имеется разница (Р 0,95) в частоте метафаз с аберрациями коб.Хелсора (9,8%) и ахалтекинских лошадей (6,33%). При сравнении этого же показателя у коб.Хелсора и полукровных лошадей (3,79%), разница более значительна (Р 0,999).

    При сравнении показателя частоты аберраций на 100 клеток Коб.Хелсора (9,83) и полукровных лошадей (3,96) обнаруживается значительная разница (Р 0,999).

    У коб.Форма исследовали 50 метафаз на наличие хромосомных аберраций. Было выявлено 4 аберрантные метафазы (8,0%) с шестью аберрациями, что составляет 2 аберраций на 100 клеток. Аберрации представленные одиночными фрагментами — 33,33%, парными — 33,33%. Две аберрации (33,33%) были представлены кольцевыми хромосомами.

    Пробелы присутствовали в 4% от общего числа исследованных метафаз, что при пересчете на 100 клеток составляет — 4 пробела. Гэпы были обнаружены в метафазах, уже имеющих аберрации.

    Результаты, полученные при исследовании частоты структурных аберраций, коб.Форма сравнивались с данными чистокровных верховых лошадей.

    Частота метафаз с аберрациями у коб.Форма (8%) выше таковой у лошадей чистокровной верховой породы. Разница достоверна (Р 0,98).

    Походы Чингисхана, набеги викингов, появление европейцев в Америке – крупные завоевания и переселения народов сопровождались не менее масштабными перемещениями домашних животных, в том числе лошадей. Возможно ли сегодня увидеть следы этих переселений? Можем ли мы заглянуть еще глубже в историю, в те далекие времена, когда не существовало ни летописей, ни летописцев? Ведь история конских пород с достоверностью прочитывается лишь на считанные века, и чем древнее порода, тем большим количеством мифов и предвзятых представлений окутывается ее происхождение. Что уж тут говорить о временах одомашнивания лошади! Но похоже, что современная наука готова пролить свет на этот вопрос.

    Все мы – дети своих матерей

    Как известно, все свойства организма, все его функции определяются наследственной информацией, «записанной» в молекуле ДНК. ДНК составляет «начинку» хромосом, имеющихся в ядрах практически всех клеток организма. Молекулы ДНК парные: одну половину организм получат от отца, другую – от матери. Так природа обеспечивает внутривидовое разнообразие, ведь даже для одной пары генов в процессе оплодотворения могут образоваться четыре комбинации, отличные от родительских, а генов-то в каждой ДНК тысячи! Так что абсолютно идентичный генетический набор среди животных имеют только однояйцевые близнецы и клоны.

    Однако ДНК содержатся не только в ядрах клеток: малые порции ДНК обнаружены и в митохондриях – особых образованиях внутри клетки, ответственных за обеспечение организма энергией. Важная особенность ДНК митохондрий состоит в том, что передаются они только от материнского организма, в котором происходит развитие эмбриона. Благодаря этому, изучая ДНК митохондрий, можно очень четко проследить происхождение организма по материнской линии. Сегодня изучение ДНК митохондрий – это передовой край науки, на котором происходят интереснейшие открытия, порой ломающие представления, считавшиеся незыблемыми на протяжении десятилетий.

    В погоне за мустангом

    Все началось в 1995 году с попытки группы английских и немецких ученых уточнить происхождение североамериканских мустангов. В соответствии с существующими представлениями мустанги являются потомками лошадей, привезенных в Новый Свет испанцами. Например, во время похода против ирокезов у Писсаро было 180 солдат и 62 лошади, большая часть которых потерялась во время песчаной бури. Колумб после открытия Америки отправил в новые колонии партию отборных испанских коней; правда, в последний момент нечестные торговцы подменили их мелкими невзрачными лошаденками. Испанцы занялись коневодством в Новом Свете сразу после завоевания континента – верховые лошади были нужны войскам. И практически сразу начала образовываться популяция из потерявшихся, сбежавших, угнанных индейцами и в конце концов одичавших лошадей.

    Логично было ожидать, что ДНК митохондрий у современных мустангов и у лошадей Пиренейского полуострова имеют много общего. Ученые взяли пробы из корней волос шестидесяти лошадей четырех различных пород: мустангов, польских коников, эксмурских пони и сорайя – аборигенных лошадей Испании. И вот что удивительно: ДНК, сходная с ДНК лошадей породы сорайя, имелась лишь у части мустангов; более того, многие пробы, взятые у мустангов, вообще не обнаруживали сходства с пробами исследованных европейских пород.

    Эти результаты настолько заинтересовали ученых, что решено было продолжить исследования. Теперь были собраны пробы от 318 лошадей двадцати пяти европейских и восточных пород, в том числе андалузской, лузитанской, сеннерской, дюльменской, роттальской, норийской, рейнской тяжеловозной, шайрской, арабской, варварийской, норвежской, эксмурских пони и, естественно, все тех же главных героев – мустангов. Были также использованы уже опубликованные результаты исследований 334 других лошадей, так что всего анализу подверглись ДНК митохондрий 652 лошадей. Это самый многочисленный банк данных, задействованный в исследованиях такого рода. В них вошли также пробы от останков 43 лошадей доисторического времени, найденных археологами в вечной мерзлоте Скандинавии, а также от лошадей Пржевальского.

    И тут ученых ждал совершенно неожиданный поворот событий. Исследования многих других домашних животных дают небольшое число вариантов митохондриальной ДНК – это свидетельствует о том, что все домашние породы происходят от сравнительно небольшой группы диких животных, прирученных на определенной территории, потомки которых распространились потом по всему миру. С лошадьми же все оказалось с точностью до наоборот: число разновидностей ДНК достигло 93! А ведь в банк данных вошли пробы далеко не от всех популяций, составляющих шестидесятимиллионное конское население нашей планеты. Причем возникновение большинства вариантов ДНК (77) относится ко времени, предшествовавшему одомашниванию, а именно до окончания последнего ледникового периода, то есть около 11400 лет тому назад.

    Какой из этого следует вывод? У домашних лошадей был не один, а несколько диких предков, и одомашнивали их независимо друг от друга жители разных регионов Земли. Кстати, вариантов ДНК, имеющихся у единственного сохранившегося подвида дикой лошади – лошади Пржевальского – не было найдено ни у одной из домашних лошадей, в том числе монгольских, с которыми она веками жила бок о бок. Это значит, что лошадь Пржевальского нельзя считать предком домашних лошадей.

    Мифы и реальность

    Из 93-х обнаруженных вариантов ДНК ученые сконструировали своего рода «родословное древо» исследованных лошадей. Родственные варианты были объединены в семнадцать групп, и у каждой из таких групп можно предполагать общего предка. Частично варианты ДНК распределились по географическому принципу; одновременно подтвердились результаты опубликованных ранее исследований, определявших ареалы различных форм диких лошадей. Например, одну группу составили северные и северо-западные европейские пони (эксмурские, исландские, хайлендские и фьордские). К этой же группе относятся пробы, взятые из останков лошадей, найденных при раскопках поселений викингов. Общее происхождение всех этих пород не вызывает сомнений.

    Одинаковые митохондриальные ДНК имеют также лошади Пиренейского полуострова и Северной Африки: андалузские, лузитанские и варварийские. Можно предположить, что они происходят от совсем другой, собственной исходной популяции. И большой неожиданностью для исследователей стало то, что никак не подтверждается распространенная версия о родстве варварийских лошадей с арабскими – их ДНК не имеют ничего общего! Что удивительно, у арабских лошадей вообще не был найден единый тип ДНК. С другой стороны, не очень большими оказались различия у арабов и каспийских пони – возможно, в дальнейшем можно будет выявить родство этих двух пород.*

    Вопреки распространенному мнению, сорайя (слева) вряд ли были предками андалузских лошадей (справа).

    Совершенно неожиданно в одной группе с варварийскими и пиренейскими лошадьми оказалась дюльменская порода из Германии. Эти мелкие, в основном мышастые примитивные лошадки с начала XIV века живут в полудиком состоянии в поместье Мерфельде Брух в Вестфалии – считается, что они происходят от местных диких лошадей, водившихся некогда в Германии. В свете последних исследований закономерно задаться вопросом: а действительно ли это так?

    Можно было предположить, что сорайя – аборигенная порода Пиренейского полуострова – имеет сходные ДНК с андалузскими и лузитанскими лошадьми. Ведь именно этих мелких мышастых лошадок, слегка напоминающих компактным сложением и выпуклым профилем головы своих более именитых соотечественников, некоторые иппологи считают прямыми, а то и чуть ли не единственными предками андалузцев. И не сорайя ли поплыли в кораблях Колумба к американским берегам вместо породистых испанских лошадей – не найдутся ли их следы в Новом Свете? Однако результаты исследований, как говорится, спутали все карты: ДНК сорайя не встречаются ни у одной другой породы Пиренейского полуострова. Сорайя были открыты в диком состоянии более 80 лет назад португальским исследователем д’Андраде – так не являются ли они прямыми потомками диких лошадей?

    Внимание исследователей привлекла ныне почти неизвестная сеннерская порода – некогда ее представители славились в Германии своей прочностью и выносливостью. То, что все исследованные лошади имеют одинаковые ДНК, неудивительно – все они происходят от одной кобылы, жившей в XVIII веке. Но того, что характерный для сеннеров вариант ДНК почти не встречается у лошадей других пород, не ожидал никто.

    А как же мустанги? Многие из них, как и ожидалось, оказались в одной группе с пиренейскими и варварийскими лошадьми. Что же касается остальных, то не надо забывать о влиянии лошадей других европейских пород, которых привозили более поздние переселенцы.

    Что ж, исследования продолжаются. И кто знает, не придется ли в скором времени переписывать историю конских пород?

    По материалам журнала «St. George»,

    * Возможно, разнообразие митохондриальных ДНК арабских лошадей указывает на их смешанное происхождение от различных азиатских популяций. Ведь в соответствии с исследованиями советских ученых лошадь появилась у арабов сравнительно недавно (в первые века нашей эры), а коневодческая культура была заимствована у других народов, в том числе с Востока. К сожалению, в исследования не вошли данные о среднеазиатских (ахалтекинской, карабаирской и т.д.) и степных породах лошадей.

    Комментарий из ВНИИ коневодства

    Начало нового тысячелетия ознаменовалось быстрым прогрессом в области генетических исследований, включая методы изучения и конструирования ДНК, и успешным завершением проекта по созданию генома человека. Заметные успехи были получены и при изучении генома лошади – удалось картировать 30 из 32 ее хромосом. Исследования генетической структуры ДНК лошадей ведутся многими научными лабораториями (число которых уже превысило 60), в том числе и нашей. Интересные результаты по типированию геномной и митохондриальной ДНК лошадей отечественных пород получены в Институте общей генетики им. Вавилова. Новейшие научные данные об особенностях хромосомной и митохондриальной ДНК лошадей являются ценнейшей информацией, позволяющей пролить свет на многие вопросы, касающиеся происхождения эквидов, одомашнивания лошади, создания и последующей микроэволюции пород. Результаты, полученные немецкими и английскими исследователями при изучении митохондриальной ДНК 318 лошадей 25 разных пород, очень интересны. Они дают новые ответы на вопросы о времени и месте одомашнивания лошади и генетических аспектах межпородной дифференциации. Однако митохондриальные ДНК – это только 20-30% всей наследственной информации организма. Если же они подтвердятся исследованиями хромосомного набора, то, возможно, придется переписывать учебники по коневодству.

    Л.А.Храброва, кандидат с/х наук,
    зав. лаборатории иммуногенетики

    Лошадь Пржевальского – не «бабушка», а «тетя»

    Вопрос о том, сколько предков было у домашних лошадей, один или много, оставался открытым на протяжении десятилетий. Предположение о нескольких центрах приручения лошади высказывал еще Чарльз Дарвин. Упорно сохранялись, особенно в иностранной литературе, представления о причастности к происхождению если не всех, то хотя бы части конских пород азиатской дикой лошади – лошади Пржевальского. Действительно, лошади Пржевальского при скрещивании с домашними лошадьми дают плодовитое потомство, так что это не отдельный вид, а всего лишь подвид лошадей, причем единственный сохранившийся в диком состоянии. Правда, летописи и свидетельства очевидцев говорят о другой, европейской дикой лошади – тарпане. Судя по всему, тарпан имел большие внешние отличия от лошади Пржевальского и в масти, и в телосложении. Однако тарпаны были истреблены еще в XIX веке, и об их генотипе и истинном месте в родословной семейства лошадиных можно лишь строить предположения.

    Что же касается лошади Пржевальского, то еще в 1949 году советский палеонтолог В.Громова сделала вывод о невозможности считать монгольскую дикую лошадь предком домашних лошадей. Изучая скелеты ископаемых и современных лошадей, Громова выявила пути эволюции, происходившей в Европе и Азии. Так вот, отличия в строении черепа, зубов, конечностей показали: лошадь Пржевальского – самостоятельная ветвь в «лошадиной семье», причем развивавшаяся гораздо медленней основного «ствола», давшего в конце концов современные конские породы. Дело в том, что климат в Европе менялся очень сильно: ледник то наступал, то таял, и европейским лошадям приходилось постоянно приспосабливаться к новым условиям. В то же время климат Центральной Азии, не испытавшей оледенения, оставался сравнительно стабильным, и местная разновидность лошадей оставалась как бы застывшей.

    admin